序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
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1 | TBDTM 细胞分离专用抗凝剂 | TBDTM-0050 | 100ml |
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2 | TBDTM-0200 | 200ml |
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3 | TBDTM-0500 | 500ml |
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4 | TBDTM 实验动物一次性使用负压采血管 | TBDTM-0001 | 5ml/支 |
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分离出的 PBMC 需要进行下一步细胞培养（如培养 NK、CIK 细胞）：选择肝素抗凝剂。
由于血浆中的纤维蛋白原活化成有活性的纤维蛋白，纤维蛋白交联成纤维蛋白血凝块，易使 PBMC 形成细胞团块，不利于细胞的活化。肝素钠抗凝剂可减轻上述情况发生几率。分离出的 PBMC 无需培养，而是用于其他检测：选择枸橼酸钠抗凝剂，分离效果最佳。
3.PBMC最佳分离时间
血液离体后 2 小时内。如达不到 2 小时内分血条件，请务必于 4 小时内进行分血步骤，
超过 4 小时很难顺利进行分离。
血液离体时间 | 分离效果 |
|---|
2 小时内 | 最佳 |
2-4 小时 | 可接受 |
4-6 小时 | 细胞活性下降，分离效果不佳 |
6 小时以上 | 分离效果极差，直至分离不出细胞 |
4.分离液的使用环境
a. 分离液需常温（37℃-15℃）避光保存，严禁冷藏冷冻保存；
b. 使用时严格遵守无菌操作规范（超净工作台或生物安全柜内），并在 18℃-22℃环境温度下进行操作，20℃条件下分离效果最佳。超出此温度范围，有可能使分离液密度发生改变，造成分离效果不佳。
5.PBMC高效离心管（详见 PBMC 高效离心管使用说明）
序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
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1 | PBMC 高效离心管/50ml | 601001 | 20支/盒 |
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2 | PBMC 高效离心管/15ml | 601002 | 5支/包 |
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6. 参考值（目的细胞参考范围）
本试剂可保证目的细胞的提取率大于 80%，不是纯度。如需获得高纯度目的细胞，请配合免疫磁珠分选。本试剂盒可减少磁珠的使用量，减少成本。
【检验方法】
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃（试剂需要复温。夏季 20℃， 冬季 23℃）的条件下进行。
血液样本需要稀释时，实验方法如下：
稀释方法：1 份的 PBS 或样本稀释液(产品编号：2010C1119 需另购)加 2 份的血液进行稀释（PBS:抗凝血＝1:2）；
注：稀释液要求：用不含钙镁离子的缓冲液或培养基进行血液稀释。 稀释图例
各种规格离心管的使用方法（推荐最佳方法）
取一支无菌离心管，加入分离液，后缓慢加入血液样本或新鲜抗凝血。血液样本或 新鲜抗凝血小心加于分离液液界面之上。（若采血量较少，需小量分离，分离液的量不得少于 3ml，抗凝血量在 0.2-3ml 之间）
1.15ml 离心管（包括高效离心管）：
A. 最佳比例：5ml 分离液+ 4ml 稀释过的血液；
B. 最佳离心条件：20℃环境下，500g 离心 25min。
2.50ml 离心管（包括高效离心管）：
A. 最佳比例：20ml 分离液+ 20ml 稀释过的血液；
B. 最佳离心条件：20℃环境下，650g 离心 30min。
未经稀释的抗凝血分离方法（细胞培养、或需保存血浆推荐用此方法）：
3.使用 15ml 离心管（或 15ml 高效离心管）：
A. 15ml 普通离心管最佳比例：5ml 分离液+ 5ml 抗凝血；
B. 15ml 高效离心管最佳比例：4ml 分离液+ 5ml 抗凝血；
C. 最佳离心条件：20℃环境下，600g 离心 25min。
注：获得纯度较高的血浆：离心后，吸取血浆层由上至下的 2/3 处血浆，下 1/3 处血浆可能包含部分 PBMC 及少量分离液成分；
4.使用 50ml 离心管（或 50ml 高效离心管）：
A. 50ml 普通离心管最佳比例：20ml 分离液+ 20ml 抗凝血；
B. 50ml 高效离心管最佳比例：15ml 分离液+ 20ml 抗凝血；
C. 最佳离心条件：20℃环境下，600g 离心 30min。
注：获得纯度较高的血浆：离心后，吸取血浆层由上至下的 2/3 处血浆，下 1/3 处血浆可能包含部分 PBMC 及少量分离液成分。
实验后续方案
1. 离心后，离心管中由上至下分为四层。第一层为血浆层。第二层为环状乳白色（人）淋巴细胞层。第三层为透明分离液层。第四层为红细胞层。
2. ①小心吸取血浆层转移到新离心管 A 中。
②小心吸取离心管中的环状乳白色（人）淋巴细胞层转移到新离心管 B 中。
3. 向含有（人）淋巴细胞的离心管 B 中，加入 5-10ml 清洗液（产品编号：2010X1118 需另购），混匀细胞。
4. 350-450g，离心 10min。弃去上清。
5. 用吸管吸取 5ml 清洗液（产品编号：2010X1118 需另购）重悬所得细胞。
6. 350-450g，离心 10min，弃去上清。
重复清洗两次，弃去上清，用 0.5ml 清洗液（产品编号：2010X1118 需另购）或根据下一步实验要求加入相对应液体，重悬所得细胞。
分离图例
【分离过程中可能出现的情况及处理方案】
情况一：淋巴细胞层混杂红细胞
1. 吸取有红细胞混杂的淋巴细胞层。
2. 取 15 毫升离心管加入红细胞混杂的淋巴细胞层，根据红细胞残余数量酌情加入 5-8 倍 红细胞裂解液。
a.如有红细胞混杂则加入适量红细胞裂解液（产品编号：NH4CL2009 需另购）将红细胞裂解（具体方法见“红细胞裂解液使用说明”）即得目的细胞。
b.参考红细胞裂解液说明书操作。少时多次裂解后获得淋巴细胞。
【注意事项】
1. 关于血液分离液效果讨论。
A. 脐带血：脐带血收集到细胞分离时长一般大于 2 小时，冷藏存放与运输在所难免。与 外周血静脉采血相比，大多脐带血分离效果较差，为此，灏洋优化配方以提高脐带血 PBMC 分离得率，欢迎广大医疗及科研用户致电咨询。
B. 案例：应用过免疫动员剂类药物，普通的样本密度分离液分离效果较差，有大量的粒细胞混杂，不能使用。天津灏洋为客户定制一款专用的样本密度分离液，PBMC 的提取率大大提高，纯度提高了50％以上，得到客户的认可，欢迎广大医疗及科研用户致电咨询。
2. 本实验最好不使用高聚合材质（如聚苯乙烯）的塑料制品，应使用无静电、低静电离心管及未经碱处理过后的玻璃制品，因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面会变成毛面，影响细胞分离效果。
3. 吸取过多的淋巴细胞层及分离液层会导致分离液交界处的粒细胞被吸出从而使混杂的粒细胞数量增加。
4. 吸取过多的淋巴细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。
5. 不当的稀释方法会降低细胞得率及活性。稀释液要求：不含钙镁离子的缓冲液或培养基。血液样本经过稀释则分离过程中需适当降低离心力和离心时间。
6. 如实验后细胞得率或活性过低，请联系技术支持以寻求帮助。
【储存条件及有效期】
常温保存，有效期 2 年。本品易感染细菌，需无菌条件操作。无菌条件下操作，启封后置常温保存。如4℃保存，本分离液易出现白色结晶，影响分离效果。
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