密度梯度分离 > 即用型分离液

| 货号 | 规格 | 价格 | 货期 |
|---|---|---|---|
| TBD2011H05 | 2X200mL/Kit | 1900 1615 | 现货 |
详细说明 点击下载说明书
名称 | 产品编号 | 规格 | |
|---|---|---|---|
A | 分离液1 | 200ml | |
B | 分离液2 | 200ml | |
D | 2010X1118 | 200ml | |
E | 说明书 | 1份 |
【实验前准备】
1. 适用仪器
最大离心力可达 1200g 的水平转子离心机
2. 抗凝剂的选择
在动物实验采血时,很多实验者选择医用真空采血管获得抗凝血,医用采血管中的抗凝 剂只考虑血浆质量,但不利于高纯度细胞分离实验。
为此,天津灏洋特别开发出专利抗凝剂及抗凝管专用于细胞分离,改变使用普通采血管 获得抗凝血分离效果不佳,提取率及纯度低下的不良结果。
序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
|---|---|---|---|
1 | TBDTM-0050 | 100ml | |
2 | TBDTM-0200 | 200ml | |
3 | TBDTM-0500 | 500ml | |
4 | TBDTM-0001 | 5ml/支 |
3. 无菌硅化离心管
序号 | 产品名称 | 产品货号 | 规格 |
|---|---|---|---|
1 | TUB2015 | 100 支/包 |
【检验方法】
全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。 方法一(需留取血浆备用)
1. 首先取抗凝血 250g 离心 10min,弃血浆,补加胎牛血清(添加量与弃去血浆量等同)制 成细胞悬液,根据细胞悬液液体体积,选择适当离心管进行试验。
2. 取一支离心管,依次小心加入分离液 1、分离液 2(体积比为 3:1,试剂总量与细胞悬液 体积比为 2:1。如细胞悬液为 2ml,则先后加入分离液 1:3ml、分离液 2:1ml。试剂 总量最少不低于 4ml。),制成梯度界面,各液面分层一定要清晰。
3. 用吸管小心吸取细胞悬液加于分离液液面上,400-500g,离心 20-30min(注:根据血液 样本量确定离心条件,血液样本量越多,离心力越大,离心时间越长,具体离心条件需 客户自行摸索,以达到最佳分离效果)。
4. 离心后,此时离心管中由上至下分为六层。第一层为稀释液层。第二层为环状乳白色单 核细胞层(第一层白环及上层 50%分离液 2)。第三层为环状乳白色单个核细胞层(下层 50%分离液 2 及第二层白环)。第四层为透明分离液 1 液层。第五层为粒细胞层。第六层 为红细胞层。
5. 用吸管小心吸取第二层到另一 15ml 离心管中,向所得离心管中加入 10ml 清洗液(产品 编号:2010X1118),混匀细胞。
6. 250g,离心 10min。
7. 弃上清。
8. 用吸管以5ml清洗液(产品编号:2010X1118)重悬所得细胞。
9. 250g,离心 10min。
10. 重复 6、7、8,弃上清后以 0.5ml 后续实验所需相应液体重悬细胞。
分离图例:

方法二(不需血浆留存备用)
1. 根据新鲜抗凝全血样本量选取一支离心管,依次小心加入分离液 1、分离液 2(体积比 为 3:1,试剂总量与抗凝血体积比为 2:1。如抗凝血为 2ml,则先后加入分离液 1:3ml、 分离液 2:1ml。试剂总量最低不低于 4ml。),制成梯度界面,各液面分层一定要清晰。
2. 用吸管小心吸取抗凝血加于分离液液面上,400-500g,离心 20-30min(注:根据血液样 本量确定离心条件,血液样本量越多,离心力越大,离心时间越长,具体离心条件需客 户自行摸索,以达到最佳分离效果)。
3. 离心后,此时离心管中由上至下分为六层。第一层为血浆层。第二层为环状乳白色单核 细胞层(第一层白环及上层 50%分离液 2)。第三层为环状乳白色单个核细胞层(下层 50%分离液 2 及第二层白环)。第四层为透明分离液 1 液层。第五层为粒细胞层。第六层 为红细胞层。
4. 后续步骤同方法一。
【差异贴壁法纯化细胞】
(1)用单核细胞无血清培养基(产品编号:CTBD2011)或单核细胞完全培养基(产品编号:HCTBD2011)以 1.5-3×106个/ml 的密度重悬细胞,将细胞铺于一次性细胞板或 细胞瓶中,放于 37℃二氧化碳培养箱中进行贴壁培养。
(2)2-4 小时内贴壁的为巨噬细胞前体(俗称为单核细胞)。
(3)10-24 小时内贴壁的单个核细胞为内皮、内皮祖细胞、干细胞。
(4)不贴壁的为淋巴细胞。 注:
a) 无血清培养基中不含任何动物成分,为得到更佳培养效果可添加 10%自体血浆或 2-8%经灏洋筛选的胎牛血清。
b) 完全培养基中含 2-20%胎牛血清(血清具体含量由所培养的目的细胞而定)。
c) 由于每种细胞的贴壁时间存在差异可将所得细胞分开已达简单的纯化目的,此法成 本相对较低。如需获得高纯度目的细胞则需在使用分离液后选用免疫磁珠阳性或阴 性分选。
【注意事项】
1. 全过程样本、试剂及实验环境均需在 20±2℃的条件下进行。为获得最佳的实验结果,最 好在取血 2h 内进行实验,血液存放时间越长,细胞分离效果越差。血液放置超过 6h 后 分离效果更差甚至不能达到分离目的。
2. 本实验最好不要使用高聚合材质(如聚苯乙烯)的塑料制品,应使用无静电、低静电离 心管及未经碱处理过后的玻璃制品,因为静电作用将导致细胞贴壁、碱处理的玻璃表面 会变成毛面,影响细胞分离效果。
3. 如所实验后细胞得率或活性过低,请联系技术支持。
【储存条件及有效期】
常温保存,有效期 2 年。本品易感染细菌,需无菌条件操作。无菌条件下操作,启 封后置常温保存。如 4℃保存,本分离液易出现白色结晶,影响分离效果。
【参考值(参考范围)】
本实验单核细胞提取率大于 80%。 下表为成年人外周血中各种细胞的数量及比例,用户可适当进行参考。
红细胞 | 白细胞 | 血小板 | |||
|---|---|---|---|---|---|
含量(个/L) | (4.0-5.5)×1012 | (4.0-10.0)×109 | (1.0-3.0)×1011 | ||
中性粒细胞 | 淋巴细胞 | 单核细胞 | |||
50%-70% | 20%-40% | 3%-8% | |||
【可能存在的问题及解决方法】
1. 由于血液粘度、细胞密度等差异可能造成的问题及解决方案如下表所示:
出现情况 | 出现原因 | 建议解决方案 |
|---|---|---|
离心后目的细胞存在于血浆层或稀释液层 | 转速过小或离心时间过短 | 适当增减转速 |
离心后目的细胞存在于分离液中 | 转速过大或离心时间过长 | |
离心后白环层弥散 | 细胞密度过大 | 调整细胞密度 |
离心后白环层太浅或看不见 | 细胞密度过小 |
2. 离心力公式及单位换算
3. 本分离液分离细胞的原理为密度梯度离心 其密度与温度、大气压等密切相关。不同地区客户可根据当地情况对离心条件进行适当 调整。建议对离心条件进行调整时,恒定离心时间,对离心转速进行调整。
4. 本分离液依照国际标准,全部使用药用级原料,性能指标与国产同类产品略有不同,可能出现红细胞沉降不完全的情况,可以适当加大离心转速。
注:在对离心条件进行调整时,离心转速的加减以 50-100g 为基数,直至达到最佳分离效果, 离心力最小不得小于 400g,最大不得大于 1200g。离心时间以 20-30min 为准。
生产备案凭证编号:津滨海食药监械生产备20150001 号
【医疗器械备案编号】津械滨海备20140058号
【技术要求备案编号】津械滨海备20140058 号